Синтез и физико-химические свойства солей магния с 4Н-пирановыми кислотами

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В результате взаимодействия 4-оксо-4H-пиран-2,6-дикарбоновой (хелидоновой) кислоты с ацетатом магния было получено сокристаллическое соединение – хелидонат магния. Изучение процесса термоокислительной деструкции хелидоната магния показало, что его дегидратация осуществляется в два этапа, а термодеструкция органической части сопровождается ярко выраженными тепловыми эффектами. В структуре хелидоната магния вокруг катиона магния имеется как внутренняя, так и внешняя координационная сфера. Во внутреннюю сферу входят шесть молекул воды, образующие гексааквакатион магния. Внешнюю сферу образуют анионные остатки хелидоновой кислоты, связанные водородными связями с молекулами воды внутренней координационной сферы катиона магния. Структура хелидоната магния кристаллизуется в триклинной сингонии пр. гр. P1- и имеет обширную сеть водородных связей между координированными молекулами воды, анионами кислоты и катионами гексагидрата магния. Сравнительный анализ нейропротекторного действия хелидоната магния и хелидоновой кислоты показал, что оба соединения защищали культивируемые нейроны в модели клеточной ишемии. Данный эффект выражался снижением гибели нейронов при кислородо-глюкозной депривации. При этом хелидонат магния был эффективнее хелидоновой кислоты при тех же концентрациях.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

С. В. Козин

Кубанский государственный университет; Южный научный центр Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: kozinsv85@mail.ru

Лаборатория проблем распространения стабильных изотопов в живых системах

Россия, 350040, Краснодар; 344006, Ростов-на-Дону

А. A. Кравцов

Кубанский государственный университет; Южный научный центр Российской академии наук

Email: kozinsv85@mail.ru

Лаборатория проблем распространения стабильных изотопов в живых системах

Россия, 350040, Краснодар; 344006, Ростов-на-Дону

В. К. Киндоп

Кубанский государственный университет

Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 350040, Краснодар

А. В. Беспалов

Кубанский государственный университет

Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 350040, Краснодар

Л. И. Иващенко

Кубанский государственный университет

Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 350040, Краснодар

M. A. Назаренко

Кубанский государственный университет

Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 350040, Краснодар

А. В. Моисеев

Кубанский государственный аграрный университет им. И.Т. Трубилина

Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 350044, Краснодар

А. В. Чураков

Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова Российской академии наук

Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 119991, Москва

А. С. Вашурин

Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова Российской академии наук

Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 119991, Москва

Список литературы

  1. Walter a E.R.H., Hogg C., Parker D., Williams J.A. G. // Coord. Chem. Rev. 2021. V. 428. P. 213622. https://doi.org/10.1016/j.ccr.2020.213622
  2. de Baaij J.H., Hoenderop J.G., Bindels R.J. // Physiol.Rev. 2015. V. 95. P. 1. https://doi.org/10.1152/physrev.00012.2014. PMID: 25540137
  3. Louis J. M., Randis T. M. // JAMA. 2023. V. 330. P. 597. https://doi.org/10.1001/jama.2023.10673.
  4. Kim S. J., Kim D.S., Li Sh. et al. // Biol. Chem. 2023. V. 66. P. 12. https://doi.org/10.1186/s13765-022-00763-1
  5. Singh D.K., Gulati K., Ray A. // Int. Immunopharmacol. 2016. V. 40. P. 229. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2016.08.009
  6. Oh H.A., Kim H.M., Jeong H.J. // Int. Immunopharmacol. 2011. V. 11. P. 39. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2010.10.002
  7. Kim D.S., Kim S.J., Kim M.C. et al. // Biol. Pharm. Bull. 2012. V. 35. P. 666. https://doi.org/10.1248/bpb.35.666
  8. Avdeeva E., Porokhova E., Khlusov I. et al. // Pharmaceuticals. 2021. V. 146. P. 579. https://doi.org/10.3390/ph14060579
  9. Jeong H.J., Yang S.Y., Kim H.Y. et al. // Exp. Biol. Med. 2016. V. 241. P. 1559. https://doi.org/10.1177/1535370216642044
  10. Kozin S.V., Kravtsov A.A., Kravchenko S.V. et al. // Bull. Exp. Biol. Med. 2021. V. 171. P. 619. https://doi.org/10.1007/s10517-021-05281-6
  11. Rogachevskii I.V., Plakhova V.B., Penniyaynen V.A. et al. // Can. J. Physiol. Pharmacol. 2022. V. 100. P. 43. https://doi.org/10.1139/cjpp-2021-0286
  12. Kravtsov A.A., Shurygin A.Y., Skorokhod N.S., Khaspekov L.G. // Bull. Exp. Biol. Med. 2011. V. 150. P. 436. https://doi.org/10.1007/s10517-011-1162-x
  13. Shurygina L.V., Zlishcheva E.I, Kravtsov A.A., Kozin S.V. // Bull. Exp. Biol. Med. 2021. V.171. P. 338. https://doi.org/10.1007/s10517-021-05223-2
  14. Khan A., Park T.J., Ikram M. et al. // Mol. Neurobiol. 2021. V.58. P. 5127. https://doi.org/10.1007/s12035-021-02460-4
  15. Yasodha V., Govindarajan S., Low J.N., Glidewell C. // Acta Crystallogr C. 2007. V. 63. P. 207. https://doi.org/10.1107/S010827010701459X
  16. Ivashchenko L.I., Kozin S.V., Vasileva L.V. et al. // Russ. J. Coord. Chem. 2023. V. 49. P. 437. https://doi.org/10.31857/S0132344X22600412
  17. Case D.R., Gonzalez R., Zubieta J., Doyle R.P. // ACS Omega. 2021. V. 6. P. 29713. https://doi.org/10.1021/acsomega.1c04104
  18. Bannwarth C., Ehlert S., Grimme S. // J. Chem. Theory Comput. 2019. V. 15. P. 1652. https://doi.org/10.1021/acs.jctc.8b01176
  19. Pracht P., Grant D.F., Grimme S. // J. Chem. Theory Comput. 2020. V. 16. P. 7044. https://doi.org/10.1021/acs.jctc.0c00877
  20. Neese F. // WIREs Comput. Mol. Sci. 2011. V. 2. P. 73. https://doi.org/10.1002/wcms.81
  21. Neese F. // WIREs Comput. Mol. Sci. 2022. V. 12:c1606. P. 1. https://doi.org/10.1002/wcms.1606
  22. Kozin S., Kravtsov A., Ivashchenko L. et al. // Int. J. Mol. Sci. 2024. V. 25. P. 286. https://doi.org/10.3390/ijms25010286
  23. Kravtsov A., Kozin S., Basov A. et al. // Molecules. 2022. V. 27. P. 243. https://doi.org/10.3390/molecules27010243
  24. Malaganvi S.S., Tonannavar (Yenagi) J., Tonannavar J. // Heliyon. 2019. V. 5. P. 1. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2019.e01586
  25. Case D.R., Zubieta J., P Doyle R. // Molecules. 2020. V. 25. P. 3172. https://doi.org/10.3390/molecules25143172
  26. Khairnar S.I., Kulkarni Y.A., Singh K. // Rev Port Cardiol. 2024. V. 30. https://doi.org/10.1016/j.repc.2024.06.003.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Термогравиметрические кривые [Mg(H2O)6]3 · (Chel)2(HChel)2 · 6H2O.

Скачать (165KB)
Метаданные
3. Схема 1. Получение сокристаллического соединения – хелидоната магния.

Скачать (26KB)
Метаданные
4. Рис. 2. Независимая область в структуре хелидоната магния. Тепловые эллипсоиды показаны с 50%-ной вероятностью. Водородные связи обозначены пунктирными линиями.

Скачать (81KB)
Метаданные
5. Рис. 3. Влияние КГД на интенсивность флуоресценции пропидия иодида в культуре нейронов мозжечка при действии а) хелидоната магния (Хелид. Mg), б) хелидоновой кислоты (ХК). Данные представлены M ± m; * – р < 0.05 по отношению к интактным клеткам; # – р < 0.05 по отношению к клеткам, подвергшимся КГД; $ – р < 0.05 по отношению к хелидоновой кислоте.

Скачать (63KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2025